介绍
对于图像采集,标本制备有两个主要要求。样品需要放置在检测物镜的焦平面上,在盖子的两面镜子之间。另外,需要从培养皿底部稍微抬高,以便镜子/光片到达样品的远端。
一个方便的方法来定位样品在样品空间的自由区域(见上图)是使用FEP(氟化乙烯丙烯)管(见下图)。由于折射率n为1.338,FEP非常适合于浸没在水溶液中的样品成像(至少当使用中等数值孔径的物镜时[NAs])。
对于SP8DLS成像时,可以使用FEP管定位和固定标本(见下图)。
这种试件安装的优点有:
- 简单的处理和
- 可以使用低浓度的支架介质(如琼脂糖或甲基纤维素),在长期的生理条件下提供足够的标本限制在活的有机体内成像。
缺点是很难对齐标本,使感兴趣的区域暴露在用于荧光检测的一侧。
为了克服这一缺点,在保持上述优点的同时,设计了一种旋转装置,使FEP管的角度易于调整,从而使标本可以最佳地对齐成像。这种设置以前在其他地方也有过展示(1、2、3).
材料和方法
样品旋转装置(见上图,158007064)DLS成像有:
- 的DLS旋转设备;
- 显微镜玻璃盖片(21 x 26毫米);和
- FEP管(Camitec,外径2.00 mm,内径1.80 mm)。
然而,旋转装置中没有硅胶或其他材料用于密封盖滑移。
步骤一:清洗FEP管(推荐程序)
正如考夫曼在报告中所描述的et al。[4], FEP管在使用前应按下列方法处理:
- 首先,所有的溶液必须进行脱气和注射器过滤(millux - hv, PVDF, 0.45µm);
- 用1m NaOH(默克)冲洗;
- 置于0.5 M NaOH中超声10分钟;
- 用双重蒸馏的H2O和70%乙醇
- 超声在70%乙醇中浸泡10分钟;
- 用双重蒸馏的H2O;和
- 最后贮存于双馏H中2O。
步骤二:用玻璃盖滑块密封旋转装置
将盖片密封在旋转装置上的方法如下:
- 将硅胶涂抹在旋转装置底部凹槽内侧边缘(见下面A);
- 添加一个盖玻璃,轻轻按压玻璃,以确保它均匀地放置在所有点上,以保持良好的密封(见下面B);和
- 要检查室密封,向旋转装置中加入一些蒸馏水,看看是否有泄漏(见下文C)。
步骤3:将标本放入FEP管中
标本放置在安装的介质中,用移液管或注射器(如下图所示)将标本拉入管中。
FEP管的长度需要为38毫米。
步骤四:将FEP管插入旋转装置
在FEP管的两侧安装黑色的盖子(见下面的A和B)。
如下所示,将带有黑色帽和磁铁的FEP管的末端插入旋转装置的引脚(1)。
最后,管子的另一侧被固定在合适的位置(下图1)。
步骤3:开始图像采集
将玻璃底培养皿放置在顶部TCSSP8DLS扫描阶段(见下文)。
注意:旋转装置只与以下z-Galvo级刀片兼容:
- 158004118旋转插入逆和
- 158004119插入通用。
小心:初始化后只将旋转装置放入z-Galvo级。另外,在改变(照明)目标时要注意。旋转装置的轮子向下突出,可能会意外地碰到一个目标(最好先从炮塔上移走笨重的目标)。
结果
使用LightSheet向导,它包含在拉斯维加斯X软件,您现在可以获得您的标本的图像。
图12:从不同侧面观察的果蝇胚胎。单个平面是从3D图像堆栈中获取的。由帕维尔·托曼卡提供,MPI-CBG德国德累斯顿。
参考文献
- Voie, A. H., Burns, D. H. & Spelman, F. A.正交平面荧光光学切片:宏观生物标本的三维成像。j . Microsc。170年,229 - 236 (1993)
- 基于微珠的选择性平面照明显微数据配准软件。7(6):418-9辅料:https://imagej.net/_images/3/32/nmeth0610 - 418 s1.pdf
- T. Bruns, S. Schickinger, H. Schneckenburger,用于3D显微镜下标本轴向旋转的样品支架,首次发表于2015年5月6日,https://doi.org/10.1111/jmi.12263,引自:9
- a . Kaufmann, M. Mickoleit, M. Weber, J. Huisken,多层安装使斑马鱼发育在光板显微镜下的长期成像,《发展》(2012)139卷,iss。17日,页。3242 - 3247;DOI: 10.1242 / dev.082586。
编者注:这是协议的修订版。它现在包含了EMBO Light sheet课程的参考资料,其他作者,以及描述类似样品持有人的其他出版物。
在EMBO课程的精神下,通过使用获取的图像堆栈使它们适应斐济多视图融合插件(https://imagej.net/Multiview-Reconstruction).